一种产蛋后期蛋鸡用海洋红酵母添加剂及其应用

1.本发明涉及海洋红酵母技术领域，尤其是涉及一种产蛋后期蛋鸡用海洋红酵母添加剂及其应用。


背景技术：

2.海洋红酵母菌(rhodotorulabenthica)是海洋中自然存在的一类抗逆性很强的天然单细胞酵母品系，菌体呈圆形或卵圆形，菌落红色，亮丽，富含蛋白质、氨基酸、维生素、不饱和脂肪酸、肝糖颗粒、动物幼体生长激素以及以虾青素为主的类胡萝卜素等多种活性物质和营养因子。
3.此外，海洋红酵母菌的适口性好，细胞大小在4～6μm之间；由于其培养可产生多种类胡萝卜素，还是天然色素源；海洋红酵母菌还能刺激宿主消化道内有益菌的生长繁殖，改善宿主的生产性能和健康状态，提高宿主的养分吸收率和抗氧化能力，是具有很大潜力的动物饲料添加剂。
4.目前，海洋红酵母菌在水产品养殖方面的研究已比较成熟，得到了大面积的推广，并取得了可喜的成绩，例如在饲料中添加海洋红酵母可以促进罗非鱼(oreochromis niloticus)生长、降低饲料系数、提高消化酶活性和增强非特异性免疫；可以显著增加对虾的终末质量，并且可以提高日本对虾(penaeusjaponicus)幼体的成活率，促进其生长发育。
5.但是，市面上的海洋红酵母菌往往存在菌密度低、活菌率不高等缺陷，并且，海洋红酵母菌在家禽中的研究和应用较少，未见制备针对产蛋后期蛋鸡的海洋红酵母添加剂的报道。


技术实现要素：

6.本发明的目的是提供一种产蛋后期蛋鸡用海洋红酵母添加剂及其应用，以提高海洋红酵母添加剂中的活菌率，提供一种针对产蛋后期蛋鸡的海洋红酵母添加剂。
7.为实现上述目的，本发明提供的一种产蛋后期蛋鸡用海洋红酵母添加剂及其应用。
8.海洋红酵母菌株(rhodotorula sp)购自北京北纳创联生物技术研究院bncc，保藏编码为119738。
9.一种产蛋后期蛋鸡用海洋红酵母添加剂的制备方法，包括以下步骤：
10.s1、平板活化，将海洋红酵母菌株冻干粉浸湿，接种在平板活化培养基上对菌株进行活化、培养，获得菌株单菌落；
11.s2、种子培养，挑取单菌落接种到种子培养基中，好氧培养，得到初级种子液；
12.s3、发酵培养，取所述初级种子液接种到发酵培养基中好氧培养，得到发酵液；
13.s4、扩大培养，将所述步骤s3获得的发酵液加入发酵罐中，在30℃，通气量为1:0.5～1:1.2，罐压为0.03～0.05mpa，ph为5.0～6.0的条件下进行扩大培养；
14.s5、制备浓菌粉，停罐后将发酵液离心，得到菌泥，将菌泥制成湿粉，再制成浓菌粉
即可。
15.优选的，所述步骤s1中采用无菌水浸湿菌株冻干粉；以划线的方式进行活化；培养温度为30℃，培养时间为48h。
16.优选的，所述步骤s2中接种比例为接种环挑取1次:50ml种子培养基；培养条件为30℃、220r/min，培养时间为48h。
17.优选的，所述步骤s3中初级种子液的量为发酵培养总体积的5％；培养条件为30℃、220r/min，培养时间为48h。
18.优选的，所述平板活化培养基的组分为酵母粉：麦芽提取物:葡萄糖:蛋白胨:琼脂:蒸馏水的质量体积比为3:3:10:5:20:1，ph为6.0
±
0.2；所述种子培养基和发酵培养基的组分均为为酵母粉:麦芽提取物:葡萄糖:蛋白胨:蒸馏水的质量体积比为3:3:10:5:1，ph为6.0
±
0.2。
19.优选的，所述步骤s4中发酵液占发酵罐总培养体积的5％，发酵罐中的总培养体积占发酵罐总体积的50％；初始转速为200r/min，每次调高25r，直到调节到最大值500r/min为止；ph通过添加补料培养基进行调控；通过调节转速和通气量或调节添加补料培养基的速度来使do值保持在20％～40％；当添加补料培养基后，do值返升至80％时，停止添加补料培养基，继续发酵培养，当do值不再明显增加，镜检发现细胞大部分都变成单个独立状态时，降温停罐；停罐至离心的时间间隔不大于2h；离心时物料泵压力为0.06～0.08mpa，单次离心时间不大于40min。
20.优选的，所述步骤s4扩大培养的培养基组分为蛋白胨1.5％、酵母粉0.5％、葡萄糖2％、消泡剂0.05％；补料培养基的组分为蛋白胨10％、酵母粉5％、葡萄糖30％、硫酸铵5％、消泡剂0.5％；所述扩大培养的培养基和补料培养基均用naoh调ph至6.0
±
0.2后115℃灭菌30min。
21.优选的，所述步骤s5中制备浓菌粉的步骤为：
22.s5-1、取离心后获得的菌泥，按菌泥:二氧化硅的质量比为1:0.5的比例添加二氧化硅，搓成不大于1cm的菌团，静置5min后过40目筛；
23.s5-2、将混合物置于摇摆式制粒机中，过80目筛，以菌泥:二氧化硅:水溶性淀粉的质量比为1:0.5:1.5的比例加入水溶性淀粉，搅拌均匀即为湿粉；
24.s5-3、将湿粉置于槽氏混合机中，以湿粉:无水硫酸钠:水溶性淀粉的质量比为1:1:3的比例先加入无水硫酸钠，混合5min后，再加入水溶性淀粉，混合10min即为浓菌粉。
25.一种如上所述制备方法制备的产蛋后期蛋鸡用海洋红酵母添加剂。
26.一种如上所述制备方法制备的海洋红酵母添加剂在提高蛋鸡生产性能、改善蛋品质和抗氧化机能中的应用。
27.因此，本发明提供的一种产蛋后期蛋鸡用海洋红酵母添加剂及其应用，具有如下技术效果：
28.1.本发明提供的海洋红酵母菌活化、扩大培养的方法可以获得大量、高活性的海洋红酵母菌；
29.2.本发明制备的海洋红酵母菌添加剂活菌率高、菌活性强，可以有效提高产蛋后期蛋鸡的生产性能和抗氧化机能、改善产蛋后期蛋鸡的蛋品质；
30.3.本发明丰富了海洋红酵母的功效，扩宽了生产应用范围，有助于提高畜牧业经
济效益。
31.下面通过附图和实施例，对本发明的技术方案做进一步的详细描述。
附图说明
32.为了更清楚地说明本发明实施例的技术方案，下面将对本发明实施例的描述中所需要使用的附图作简单地介绍，显而易见地，下面描述中的附图仅仅是本发明的一些实施例，对于本领域普通技术人员来讲，在不付出创造性劳动性的前提下，还可以根据这些附图获得其他的附图。
33.图1是本发明实施例二中不同培养温度下的菌数；
34.图2是本发明实施例二中不同转速培养下的菌数；
35.图3是本发明实施例二中不同ph培养下的菌数；
36.图4是本发明实施例四中海洋红酵母菌落照片；
37.图5是本发明实施例四中海洋红酵母菌落的镜检图；
38.图6是本发明效果例三中添加不同剂量海洋红酵母添加剂对产蛋后期蛋鸡抗氧化性能的影响。
具体实施方式
39.以下通过附图和实施例对本发明的技术方案作进一步说明。
40.为了使得本技术的目的、技术方案及优点更加明确、透彻和完整，下面通过附图和实施例，对本发明的实施例中的技术方案进行清楚、完整地描述。
41.以下实施例中所用试剂、原料和仪器设备信息如下：
42.酵母粉为安琪酵母股份有限公司；麦芽提取物为青岛海博生物科技有限公司生产；葡萄糖为河北金峰淀粉糖醇有限公司生产的一水葡萄糖；琼脂和蛋白胨均为北京奥博星公司生产；消泡剂为金湖德兴精细化工公司生产，批号为dx-30b(gpe)；摇摆式制粒机为常州苏正干燥设备有限公司生产，型号为yk-160；蛋壳强度测定仪为日本robotmation公司生产，型号是efg-0503；蛋壳厚度计为日本robotmation公司生产，型号是etg-1061；多功能蛋品质分析仪为日本robotmation公司生产，型号是emt-5200；电子秤为永康市永州衡器有限公司东阳分公司生产，型号为acs-30；电子天平为上海沪粤明科学仪器有限公司生产，型号为jy3002；显微镜为上饶宏光仪器有限公司生产，型号为xsp-35btv。
43.实施例一
44.配制培养基
45.平板活化培养基：准确称取酵母粉3.0g，麦芽提取物3.0g，葡萄糖10.0g，蛋白胨5.0g，琼脂20.0g，蒸馏水1l，搅拌使各组分充分溶解，用1mol/l的naoh调ph至6.0
±
0.2，115℃灭菌30min。
46.种子培养基：配制方法与平板活化培养基完全相同，只是不添加琼脂。
47.发酵培养基：配制方法与平板活化培养基完全相同。
48.扩大培养的培养基：配制方法与平板活化培养基完全相同，只是各组分分别为蛋白胨750g，酵母粉250g，葡萄糖1000g，消泡剂25g，加无菌水补齐至50l。
49.补料培养基：配制方法与平板活化培养基完全相同，只是各组分分别为蛋白胨
500g，酵母粉250g，葡萄糖1500g，硫酸铵250g，消泡剂25g，加无菌水补齐至5l。
50.实施例二
51.对海洋红酵母培养条件进行单因素优化
52.(1)温度对海洋红酵母生长的影响
53.分别于22℃、26℃、30℃和34℃条件下对活化后海洋红酵母进行种子培养，48h后分别测定不同培养温度下培养基中的菌体产量。
54.(2)转速对海洋红酵母生长的影响
55.分别于160r/min、180r/min、200r/min和220r/min四种不同摇床转速下对活化后海洋红酵母进行种子培养，48h后分别测定不同摇床转速下培养基中的菌体产量。
56.(3)ph对海洋红酵母生长的影响
57.分别于ph为5.0、5.5、6.0和6.5的四种种子培养基中培养活化后的海洋红酵母，48h后分别测定不同ph的培养基中的菌体产量。
58.实施例三
59.海洋红酵母的活化和扩大培养，包括以下步骤
60.s1、平板活化，在超净工作台中，将海洋红酵母菌株冻干粉用无菌水浸湿，以划线的方式将海洋红酵母菌接种在实施例一制备的平板活化培养基上对菌株进行活化，然后在30℃培养箱中培养48h后获得菌株单菌落；
61.s2、种子培养，在超净工作台中，取实施例一制备的种子培养基50ml至250ml无菌锥形瓶中，用接种环挑取步骤s1获得的单菌落，然后将带菌的接种环在三角瓶的培养液中搅拌，使接种环上的菌与培养液充分混合，封口后，将锥形瓶置于30℃、220r/min条件下，好氧培养48h，得到初级种子液；
62.s3、发酵培养，取50ml实施例一制备的发酵培养基加入到250ml锥形瓶中，然后加入2.5ml步骤s2获得的初级种子液，在30℃、220r/min条件下，好氧培养48h，得到发酵液；
63.s4、扩大培养，取实施例一制备的扩大培养培养基50l加入100l的发酵罐中，然后加入2.5l步骤s3获得的发酵液，在温度为30℃，通气量为1:0.5，使罐压保持在0.03～0.05mpa之间，初始转速为200r/min的条件下培养。
64.当溶氧量(do)出现返升时开始添加补料培养基，补料以后，ph值和do值均会下降，当do值下降到30％后，通过调节转速和通气量控制do在20％～40％之间，转速每次调高25r，直到调节到最大值500r/min为止。
65.实施例四
66.制备一种产蛋后期蛋鸡用海洋红酵母添加剂浓菌粉，包括以下步骤：
67.s5-1、实施例二中，当do值返升至80％时，停止添加补料培养基，继续发酵培养，当do值不再明显增加，镜检发现细胞大部分都变成单个独立状态时，降温停罐。
68.s5-2、当发酵罐降至室温后，立刻将发酵液注入消毒过的发酵液贮罐，离心时将物料泵压力设为0.06mpa，离心35min，沉淀即为菌泥。称取10kg菌泥，5kg二氧化硅，混合均匀，手动搓成1cm左右的菌团，静置5min过40目筛粉碎后置于摇摆式制粒机，然后过80目筛制成细粉。向细粉中加入15kg水溶性淀粉，搅拌均匀，即得湿粉。
69.s5-3、准确称取30kg无水硫酸钠，加入制备的湿粉中，于槽式混合机中混合5min，再加入90kg水溶性淀粉，混合10min，即得添加剂浓菌粉。
70.效果例一
71.海洋红酵母添加剂对产蛋后期蛋鸡生产性能的影响
72.选取体重相近的433日龄健康海兰褐蛋鸡900只，随机分为5组，每组设置6个重复，每个重复30只鸡。其中一组为对照组，饲喂基础日粮(南阳市丰园禽业有限公司生产的蛋鸡产蛋后期配合饲料-526)，其他4组为试验组，分别饲喂按质量分数0.5％、1％、1.5％、2％的比例添加了实施例四制备的海洋红酵母添加剂浓菌粉的基础日粮。
73.试验组和对照组采用相同的饲养管理条件，试验饲料现配现用。饲喂90天后，记录和统计各组的平均蛋重、产蛋率、平均日采食量和料蛋比指标。
74.①
产蛋率计算
75.在每天上午10：00进行人工收蛋，对每小组产蛋数进行统计记录，最终以每四周为一阶段，共分为三个阶段，计算产蛋率。
76.②
平均蛋重计算
77.每天以组为单位进行收蛋，用电子称对每组蛋进行称重并记录，最终以每四周为一阶段，共分为三个阶段，计算平均蛋重。
78.③
料蛋比计算
79.以每四周为一阶段，对料蛋比进行计算，料蛋比＝日耗料重/日产蛋重，四周累计计算。
80.④
平均日采食量计算
81.每周结束对每个重复组的余料用电子称进行称重并记录，最终以每四周为一阶段，共分为三个阶段，计算平均日采食量。
82.效果例二
83.海洋红酵母添加剂对产蛋后期蛋鸡蛋品质的影响
84.饲喂结束后每组随机挑选60枚蛋进行蛋品质测定，记录数据。在鸡蛋采集24小时内完成鸡蛋的内外质量分析。记录和统计各组的蛋壳颜色、蛋形指数、蛋壳厚度、蛋壳强度、蛋白高度、蛋黄颜色、哈氏单位、蛋黄重。
85.①
蛋壳强度：用蛋壳强度测定仪测定蛋壳强度，将鸡蛋钝端向上、锐端朝下放到蛋壳强度测定仪上，探头向下移动，当蛋壳出现第1道裂纹时的数值即为蛋壳强度值。
86.②
蛋壳厚度：利用蛋壳厚度计测定蛋壳厚度，分别取鸡蛋钝端、赤道和锐端的蛋壳进行测定，取三者的平均值作为蛋壳厚度。
87.③
蛋白高度、蛋黄颜色和哈氏单位：利用多功能蛋品质分析仪测定。
88.④
蛋形指数：采用游标卡尺测定蛋纵径与横径，计算蛋形指数＝纵径/短径。
89.⑤
蛋黄重：采用分离器分离蛋黄，电子天平测定蛋黄重。
90.效果例三
91.海洋红酵母添加剂对产蛋后期蛋鸡抗氧化性能的影响
92.将饲喂结束后的试验鸡禁食12h，然后屠宰，采集血液，蛋黄、肝脏；血清(将血液在4℃、3000rpm/min条件下离心15min，吸取上层血清)；组织(蛋黄、肝脏)研磨取均浆。
93.用南京建成生物工程研究所生产的超氧化物歧化酶sod试剂盒、谷胱甘肽过氧化物酶(gsh-px)、过氧化氢酶cat试剂盒、丙二醛mda试剂盒进行检测，统计和分析各组sod、mda、gsh-px、cat的水平。
94.结果分析
95.图1至图3分别为实施例二中对海洋红酵母培养温度、转速和ph进行单因素优化的结果。由图1可以看出，不同温度下海洋红酵母生长能力不同，在22～30℃之间，菌数随温度的升高而增加，从培养温度为22℃时的1.01
×
108cfu/ml增加到培养温度为30℃时的最高菌数1.34
×
108cfu/ml。当温度超过30℃，菌数呈下降趋势。因此，30℃为海洋红酵母的最佳培养温度。
96.从图2可以看出，在180～220r/min范围内随摇床转速增加，溶氧量增多，一定程度上有利于菌株增长，但当转速达到240r/min时，菌数反而降低。因此，海洋红酵母的最适转速为220r/min。
97.由图3可以看出，在5.0～6.5之间，ph对菌数有影响，菌数呈现先降再升再降的特点，其中，当ph为6.0时，菌数最高，为1.33
×
108cfu/ml，在ph为5.5和6.5时，菌落数最低为1.10
×
108cfu/ml。因此，本发明中选择ph6.0来培养海洋红酵母。
98.图4为一张实施例四中获得的海洋红酵母菌落照片，图5为一张实施例四中海洋红酵母菌落的40
×
镜检图。由图中可以看出，海洋红酵母呈现卵圆形或圆形，菌落表面光滑湿润，边缘整齐、浅红色或红色、不透明，说明本发明中制备的海洋红酵母菌落状态典型，没有杂菌污染，由此进行的后续实验真实可靠。
99.效果例一中，海洋红酵母添加剂对产蛋后期蛋鸡生产性能的影响见表1。
100.表1
[0101][0102]
表中每个阶段同列肩标字母不同表示差异显著(p《0.05)。由表1可以看出，在1～4周和5～8周，海洋红酵母添加剂浓度为0.5％和1％时，产蛋率均显著性高于对照组(p《0.05)；四个阶段中，海洋红酵母添加剂浓度为0.5％时，平均蛋重均显著性高于对照组(p《0.05)；试验组4个添加浓度的平均日采食量和料蛋比均显著性高于对照组(p《0.05)。
[0103]
效果例二中海洋红酵母添加剂对产蛋后期蛋鸡蛋品质的影响见表2。
[0104]
表2
[0105][0106]
从表2可以看出，当海洋红酵母添加剂浓菌粉的添加量为0.5％时，鸡蛋的蛋白高度、蛋壳强度均显著性高于对照组(p《0.05)；4个添加浓度蛋黄色泽和哈氏单位均显著性高于对照组(p《0.05)；1.5％、2％添加量时蛋形指数均显著性高于对照组(p《0.05)。
[0107]
图6为效果例三中添加不同剂量海洋红酵母添加剂对产蛋后期蛋鸡抗氧化性能的影响，其中a为血清sod活力测量结果，b图为血清mda含量测量结果，c图为血清gsh-px活力
测量结果，d图为血清cat活力测量结果，e图为肝脏sod活力测量结果，f图为肝脏mda含量测量结果，g图为肝脏gsh-px活力测量结果，h图为肝脏cat活力测量结果，i图为蛋黄sod活力测量结果，j图为蛋黄mda含量测量结果，k图为蛋黄gsh-px活力测量结果，l图为蛋黄cat活力测量结果。
[0108]
血清和蛋黄中的sod、cat指标，试验组均显著性高于对照组；而mda指标，试验组显著性低于对照组。
[0109]
因此，本发明提供的海洋红酵母菌的活化、扩大培养的方法可以获得大量、高活性的海洋红酵母菌；制备的海洋红酵母菌添加剂活菌率高、菌活性强，当添加量为0.5％时对产蛋后期蛋鸡的生产性能和抗氧化机能、改善产蛋后期蛋鸡的蛋品质的提高效果最显著；丰富了海洋红酵母的功效，扩宽了生产应用范围，有助于提高畜牧业经济效益。
[0110]
最后应说明的是：以上实施例仅用以说明本发明的技术方案而非对其进行限制，尽管参照较佳实施例对本发明进行了详细的说明，本领域的普通技术人员应当理解：其依然可以对本发明的技术方案进行修改或者等同替换，而这些修改或者等同替换亦不能使修改后的技术方案脱离本发明技术方案的精神和范围。

技术特征：
1.一种产蛋后期蛋鸡用海洋红酵母添加剂的制备方法，其特征在于，包括以下步骤：s1、平板活化，将海洋红酵母菌株冻干粉浸湿，接种在平板活化培养基上对菌株进行活化、培养，获得菌株单菌落；s2、种子培养，挑取单菌落接种到种子培养基中，好氧培养，得到初级种子液；s3、发酵培养，取所述初级种子液接种到发酵培养基中好氧培养，得到发酵液；s4、扩大培养，将所述步骤s3获得的发酵液加入发酵罐中，在30℃，通气量为1:0.5～1:1.2，罐压为0.03～0.05mpa，ph为5.0～6.0的条件下进行扩大培养；s5、制备浓菌粉，停罐后将发酵液离心，得到菌泥，将菌泥制成湿粉，再制成浓菌粉即可。2.根据权利要求1所述的一种产蛋后期蛋鸡用海洋红酵母添加剂的制备方法，其特征在于：所述步骤s1中采用无菌水浸湿菌株冻干粉；以划线的方式进行活化；培养温度为30℃，培养时间为48h。3.根据权利要求1所述的一种产蛋后期蛋鸡用海洋红酵母添加剂的制备方法，其特征在于：所述步骤s2中接种比例为接种环挑取1次:50ml种子培养基；培养条件为30℃、220r/min，培养时间为48h。4.根据权利要求1所述的一种产蛋后期蛋鸡用海洋红酵母添加剂的制备方法，其特征在于：所述步骤s3中初级种子液的量为发酵培养总体积的5％；培养条件为30℃、220r/min，培养时间为48h。5.根据权利要求1所述的一种产蛋后期蛋鸡用海洋红酵母添加剂的制备方法，其特征在于：所述平板活化培养基的组分为酵母粉：麦芽提取物:葡萄糖:蛋白胨:琼脂:蒸馏水的质量体积比为3:3:10:5:20:1，ph为6.0
±
0.2；所述种子培养基和发酵培养基的组分均为为酵母粉:麦芽提取物:葡萄糖:蛋白胨:蒸馏水的质量体积比为3:3:10:5:1，ph为6.0
±
0.2。6.根据权利要求1所述的一种产蛋后期蛋鸡用海洋红酵母添加剂的制备方法，其特征在于：所述步骤s4中发酵液占发酵罐总培养体积的5％，发酵罐中的总培养体积占发酵罐总体积的50％；初始转速为200r/min，每次调高25r，直到调节到最大值500r/min为止；ph通过添加补料培养基进行调控；通过调节转速和通气量或调节添加补料培养基的速度来使do值保持在20％～40％；当添加补料培养基后，do值返升至80％时，停止添加补料培养基，继续发酵培养，当do值不再明显增加，镜检发现细胞大部分都变成单个独立状态时，降温停罐；停罐至离心的时间间隔不大于2h；离心时物料泵压力为0.06～0.08mpa，单次离心时间不大于40min。7.根据权利要求1所述的一种产蛋后期蛋鸡用海洋红酵母添加剂的制备方法，其特征在于：所述步骤s4扩大培养的培养基组分为蛋白胨1.5％、酵母粉0.5％、葡萄糖2％、消泡剂0.05％；补料培养基的组分为蛋白胨10％、酵母粉5％、葡萄糖30％、硫酸铵5％、消泡剂0.5％；所述扩大培养的培养基和补料培养基均用naoh调ph至6.0
±
0.2后115℃灭菌30min。8.根据权利要求1所述的一种产蛋后期蛋鸡用海洋红酵母添加剂的制备方法，其特征在于，所述步骤s5中制备浓菌粉的步骤为：s5-1、取离心后获得的菌泥，按菌泥:二氧化硅的质量比为1:0.5的比例添加二氧化硅，搓成不大于1cm的菌团，静置5min后过40目筛；s5-2、将混合物置于摇摆式制粒机中，过80目筛，以菌泥:二氧化硅:水溶性淀粉的质量
比为1:0.5:1.5的比例加入水溶性淀粉，搅拌均匀即为湿粉；s5-3、将湿粉置于槽氏混合机中，以湿粉:无水硫酸钠:水溶性淀粉的质量比为1:1:3的比例先加入无水硫酸钠，混合5min后，再加入水溶性淀粉，混合10min即为浓菌粉。9.一种如权利要求1～8任一项所述制备方法制备的产蛋后期蛋鸡用海洋红酵母添加剂。10.一种如权利要求1～8任一项所述制备方法制备的海洋红酵母添加剂在提高蛋鸡生产性能、改善蛋品质和抗氧化机能中的应用。

技术总结
本发明公开了一种产蛋后期蛋鸡用海洋红酵母添加剂及其应用，海洋红酵母添加剂的制备方法包括以下步骤：S1、平板活化，获得菌株单菌落；S2、种子培养，挑取单菌落，好氧培养，得到初级种子液；S3、发酵培养，取初级种子液中好氧培养，得到发酵液；S4、扩大培养，将发酵液进行扩大培养；S5、将菌泥制成湿粉，再制成浓菌粉即可。本发明提供的海洋红酵母菌的活化、扩大培养的方法可以获得大量、高活性的海洋红酵母菌；制备的海洋红酵母菌添加剂活菌率高、菌活性强，可以有效提高产蛋后期蛋鸡的生产性能和抗氧化机能、改善产蛋后期蛋鸡的蛋品质；丰富了海洋红酵母的功效，扩宽了生产应用范围，有助于提高畜牧业经济效益。助于提高畜牧业经济效益。助于提高畜牧业经济效益。


技术研发人员：田亚东 司素锦 康相涛 李强 赵玉点 任阳光 田翊翔 吴星 张自豪 侯萌 李艺杰 宋海杰 乐雅馨 翟彬 李冲 李琪 李敬 宫玉杰 刘小军 蒋瑞瑞 李红 张彦华 李东华 郭玉洁
受保护的技术使用者：河南农业大学
技术研发日：2023.04.18
技术公布日：2023/7/7