一种A/Cambodia/e0826360/2020(H3N2)HA抗原制备方法与流程

一种a/cambodia/e0826360/2020(h3n2)ha抗原制备方法
技术领域
1.本发明涉及生物技术领域，具体涉及一种a/cambodia/e0826360/2020(h3n2)ha抗原制备方法。


背景技术：

2.流感病毒每年在温带的秋冬季节都引起大量散发性呼吸道疾病(季节性流行病)。自1968年以来，大多数季节性流感流行是由h3n2(甲型流感病毒)引起，乙型流感病毒可能会引起较轻的疾病，但通常会导致中重度疾病的流行。
3.因此，世界卫生组织(who)每年上、下半年会分别公布下一季的北半球和南半球流感疫苗组分。who发布的2021-2022鸡胚培养流感病毒疫苗组分a/cambodia/e0826360/2020(h3n2)毒株，对其进行研究将助力疫苗相关研发或检测工作。


技术实现要素：

4.本发明的目的是提供一种a/cambodia/e0826360/2020(h3n2)ha抗原制备方法。
5.本发明发现白蛋白信号肽(信号肽al，seq id no.1)可引导流感毒株a/cambodia/e0826360/2020(h3n2)ha抗原分泌至培养上清，经过镍柱亲和层析即可获得高纯度抗原，且其分泌表达产量和分泌表达效率均显著高于ha蛋白天然信号肽(信号肽ha)和人工信号肽sp1。
6.第一方面，本发明要求保护seq id no.1所示多肽或其相关生物材料在如下任一中的应用：
7.p1、提高流感毒株a/cambodia/e0826360/2020(h3n2)ha抗原在宿主细胞中的分泌表达产量；
8.p2、提高流感毒株a/cambodia/e0826360/2020(h3n2)ha抗原在宿主细胞中的分泌表达效率；
9.p3、制备流感毒株a/cambodia/e0826360/2020(h3n2)ha抗原分泌蛋白制品。
10.所述相关生物材料为seq id no.1所示多肽的编码基因或含有所述编码基因的表达盒或重组载体或重组菌或转基因细胞系。
11.在本发明的具体实施方式中，所述重组载体为将seq id no.8所示dna片段(seq id no.8的第13-60位为信号肽a1的编码基因，即seq id no.2)插入到pcgs3载体的多克隆位点(如hind iii和pac i)后得到的重组质粒。
12.进一步地，所述宿主细胞可为真核宿主细胞。如：hek293细胞，cho细胞，酵母细胞和昆虫细胞等。
13.在本发明的具体实施方式中，所述宿主细胞具体为expi293f细胞。
14.进一步地，所述编码基因可为如下任一：
15.(a1)seq id no.2所示的dna分子；
16.(a2)在严格条件下与(a1)限定的dna分子杂交且编码seq id no.1所示多肽的dna
分子；
17.(a3)与(a1)或(a2)限定的dna序列具有99％以上、95％以上、90％以上、85％以上或者80％以上同源性且编码seq id no.1所示多肽的dna分子。
18.上述编码基因中，同源性是指核苷酸序列的同一性。可使用国际互联网上的同源性检索站点测定核苷酸序列的同一性，如ncbi主页网站的blast网页。例如，可在高级blast2.1中，通过使用blastp作为程序，将expect值设置为10，将所有filter设置为off，使用blosum62作为matrix，将gap existence cost，per residue gap cost和lambda ratio分别设置为11，1和0.85(缺省值)，检索一对核苷酸序列的同一性，进行计算，然后即可获得同一性的值(％)。
19.上述编码基因中，所述严格条件可为如下：50℃，在7％十二烷基硫酸钠(sds)、0.5m na3po4和1mm edta的混合溶液中杂交，在50℃，2
×
ssc，0.1％ sds中漂洗；还可为：50℃，在7％sds、0.5m na3po4和1mm edta的混合溶液中杂交，在50℃，1
×
ssc，0.1％ sds中漂洗；还可为：50℃，在7％sds、0.5m na3po4和1mm edta的混合溶液中杂交，在50℃，0.5
×
ssc，0.1％ sds中漂洗；还可为：50℃，在7％sds、0.5m na3po4和1mm edta的混合溶液中杂交，在50℃，0.1
×
ssc，0.1％ sds中漂洗；还可为：50℃，在7％sds、0.5m na3po4和1mm edta的混合溶液中杂交，在65℃，0.1
×
ssc，0.1％ sds中漂洗；也可为：在6
×
ssc，0.5％ sds的溶液中，在65℃下杂交，然后用2
×
ssc，0.1％ sds和1
×
ssc，0.1％ sds各洗膜一次。
20.在p2中，所述流感毒株a/cambodia/e0826360/2020(h3n2)ha抗原在宿主细胞中的分泌表达效率是指：在宿主细胞的培养上清中，所述流感毒株a/cambodia/e0826360/2020(h3n2)ha抗原的表达量与总蛋白的表达量的比值。
21.第二方面，本发明要求保护一种融合蛋白。
22.本发明所要求保护的融合蛋白自n端到c端顺次包含seq id no.1所示多肽和流感毒株a/cambodia/e0826360/2020(h3n2)ha抗原。
23.在上述第一方面和第二方面中，所述流感毒株a/cambodia/e0826360/2020(h3n2)ha抗原的氨基酸序列如seq id no.3所示。
24.在第二方面中，进一步地，所述融合蛋白具体可为将seq id no.1所示多肽融合于流感毒株a/cambodia/e0826360/2020(h3n2)ha抗原的n端后所得。
25.在本发明的具体实施方式中，所述融合蛋白的氨基酸序列如seq id no.5的第1-529位(a1信号肽+ha抗原)或第1-534位(a1信号肽+ha抗原+linker)所示或如seq id no.5(a1信号肽+ha抗原+linker+his标签)所示。
26.第三方面，本发明要求保护编码前文第二方面中所述融合蛋白的核酸分子。
27.本发明所要求保护的核酸分子自5’端到3’端顺次包含seq id no.1所示多肽的编码基因和流感毒株a/cambodia/e0826360/2020(h3n2)ha抗原的编码基因。
28.进一步地，所述seq id no.1所示多肽的编码基因可为如下任一：
29.(a1)seq id no.2所示的dna分子；
30.(a2)在严格条件下与(a1)限定的dna分子杂交且编码seq id no.1所示多肽的dna分子；
31.(a3)与(a1)或(a2)限定的dna序列具有99％以上、95％以上、90％以上、85％以上或者80％以上同源性且编码seq id no.1所示多肽的dna分子。
32.进一步地，所述流感毒株a/cambodia/e0826360/2020(h3n2)ha抗原的编码基因可为如下任一：
33.(b1)seq id no.4所示的dna分子；
34.(b2)在严格条件下与(b1)限定的dna分子杂交且相同蛋白质的dna分子；
35.(b3)与(b1)或(b2)限定的dna序列具有99％以上、95％以上、90％以上、85％以上或者80％以上同源性且编码相同蛋白质的dna分子。
36.更进一步地，所述核酸分子自5’端到3’端依次由seq id no.1所示多肽的编码基因(seq id no.2)和流感毒株a/cambodia/e0826360/2020(h3n2)ha抗原的编码基因(seq id no.4)组成。
37.在本发明的具体实施方式中，所述核酸分子为seq id no.8的第7-1599位(kozak序列+a1编码基因+ha抗原编码基因)或第7-1614位(kozak序列+a1编码基因+ha抗原编码基因++linker编码序列)所示dna分子或seq id no.8的第7-1641位(kozak序列+a1编码基因+ha抗原编码基因++linker编码序列+his标签编码序列)所示dna分子。
38.第四方面，本发明要求保护含有前文第三方面中所述核酸分子的表达盒、重组载体、重组菌或转基因细胞系。
39.其中，所述表达盒是指能够在宿主细胞中表达前文第二方面中所述融合蛋白的dna，该dna不仅包括启动目的基因转录的启动子，还可包括终止目的基因转录的终止子。进一步，所述表达盒还可包括增强子序列。
40.在本发明的具体实施方式中，所述重组载体为将seq id no.8所示dna片段(seq id no.8的第13-60位为信号肽a1的编码基因，即seq id no.2)插入到pcgs3载体的多克隆位点(如hind iii和pac i)后得到的重组质粒。相应地，所述转基因细胞系为将所述重组质粒导入到expi293f细胞后所得。
41.第五方面，本发明要求保护前文第二方面中所述融合蛋白或前文第三方面中所述的核酸分子或前文第四方面中所述的表达盒、重组载体、重组菌或转基因细胞系在如下任一中的应用：
42.p1、提高流感毒株a/cambodia/e0826360/2020(h3n2)ha抗原在宿主细胞中的分泌表达产量；
43.p2、提高流感毒株a/cambodia/e0826360/2020(h3n2)ha抗原在宿主细胞中的分泌表达效率；
44.p3、制备流感毒株a/cambodia/e0826360/2020(h3n2)ha抗原分泌蛋白制品。
45.其中，所述宿主细胞为真核宿主细胞。
46.进一步地，所述真核宿主细胞可为hek293细胞，cho细胞，酵母细胞和昆虫细胞等。
47.在本发明的具体实施方式中，所述宿主细胞具体为expi293f细胞。
48.第六方面，本发明要求保护一种制备流感毒株a/cambodia/e0826360/2020(h3n2)ha抗原分泌蛋白的方法。
49.本发明要求保护的制备流感毒株a/cambodia/e0826360/2020(h3n2)ha抗原分泌蛋白的方法，可包括如下步骤：
50.(a1)将前文第三方面中所述的核酸分子导入宿主细胞，得到重组细胞；
51.(a2)培养所述重组细胞，从培养上清中获得流感毒株a/cambodia/e0826360/2020
(h3n2)ha抗原分泌蛋白。
52.其中，所述核酸分子可通过前文所述重组载体导入所述宿主细胞。
53.步骤(a1)中，所述宿主细胞为真核宿主细胞。如：hek293细胞，cho细胞，酵母细胞和昆虫细胞等。
54.在本发明的具体实施方式中，所述宿主细胞具体为expi293f细胞。
55.步骤(a2)中，所述培养为培养至细胞活率降至65％-75％时终止培养。
56.步骤(a2)中，是按照包括如下步骤的方法从所述培养上清中获得流感毒株a/cambodia/e0826360/2020(h3n2)ha抗原分泌蛋白的：收集培养物于3500g离心30min，收集上清进行超滤浓缩和镍柱纯化。
57.本发明采用ha抗原的天然信号肽ha，人工设计信号肽sp1和白蛋白信号肽al三种引导流感毒株a/cambodia/e0826360/2020(h3n2)ha抗原真核细胞分泌表达。研究证明：白蛋白信号肽al实验组的流感毒株a/cambodia/e0826360/2020(h3n2)ha抗原分泌表达产量和分泌表达效率均显著优于天然信号肽ha组和人工信号肽sp1组，更适用于大规模工业化生产，降低生产成本。
58.本发明采用真核细胞分泌表达方式制备a/cambodia/e0826360/2020(h3n2)的ha抗原，具有以下优势：1)分泌上清蛋白背景低，易于纯化；2)可溶性表达，避免形成包涵体；3)信号肽酶精准切割，n端无冗余met残基，产生符合预期的蛋白序列。
59.本发明适用于流感疫苗开发中的抗原制备等应用。
附图说明
60.图1为重组表达质粒构建酶切鉴定图。其中，1为pcgs3-ha-ha(ha为天然信号肽)，2为pcgs3-sp1-ha(sp1为人工信号肽)，3为pcgs3-al-ha(al为白蛋白信号肽)。
61.图2为流感毒株a/cambodia/e0826360/2020(h3n2)ha抗原细胞分泌上清sds-page鉴定图。其中，1为天然信号肽ha分泌上清(转染pcgs3-ha-ha的细胞上清液)，2为人工信号肽sp1分泌上清(转染pcgs3-sp1-ha的细胞上清液)，3为白蛋白信号肽al分泌上清(转染pcgs3-al-ha的细胞上清液)，4为无转染表达质粒的阴性组(未转染任何质粒的细胞上清液)。
62.图3为流感毒株a/cambodia/e0826360/2020(h3n2)ha抗原细胞分泌上清灰度分析图。其中，箭头指示为目的条带；a为天然信号肽ha分泌上清(转染pcgs3-ha-ha的细胞上清液)，b为人工信号肽sp1分泌上清(转染pcgs3-sp1-ha的细胞上清液)，c为白蛋白信号肽al分泌上清(转染pcgs3-al-ha的细胞上清液)，d为无转染表达质粒的阴性组(未转染任何质粒的细胞上清液)。横坐标为电泳泳道的不同位置，纵坐标为灰度值。
63.图4为流感毒株a/cambodia/e0826360/2020(h3n2)ha抗原蛋白纯化sds-page纯化鉴定。其中，1为天然信号肽ha分泌表达纯化样品(转染pcgs3-ha-ha的细胞上清纯化样品)，2为人工信号肽sp1分泌表达纯化样品(转染pcgs3-sp1-ha的细胞上清纯化样品)，3为白蛋白信号肽al分泌表达纯化样品(转染pcgs3-a1-ha的细胞上清纯化样品)。
64.图5为流感毒株a/cambodia/e0826360/2020(h3n2)ha抗原纯化样品灰度分析图。其中，ha天然信号肽ha纯化样品(转染pcgs3-ha-ha的细胞上清纯化样品)，sp1为人工信号肽sp1纯化样品(转染pcgs3-sp1-ha的细胞上清纯化样品)，al为白蛋白信号肽al纯化样品
(转染pcgs3-a1-ha的细胞上清纯化样品)。横坐标为电泳泳道的不同位置，纵坐标为灰度值。
具体实施方式
65.下面结合具体实施方式对本发明进行进一步的详细描述，给出的实施例仅为了阐明本发明，而不是为了限制本发明的范围。以下提供的实施例可作为本技术领域普通技术人员进行进一步改进的指南，并不以任何方式构成对本发明的限制。
66.下述实施例中的实验方法，如无特殊说明，均为常规方法，按照本领域内的文献所描述的技术或条件或者按照产品说明书进行。下述实施例中所用的材料、试剂等，如无特殊说明，均可从商业途径得到。
67.下述实施例中的主要试剂及其厂家信息如下：
68.pcgs3表达载体：merck公司；
69.hindiii内切酶：neb公司；
70.paci内切酶：neb公司；
71.gxl premix：takara公司；
72.dna ligation kit ver.2.1：takara公司；
73.expi293f
tm cells：thermo fisher公司；
74.expi293
tm
expression medium：thermo fisher公司；
75.expifectamine
tm
293transfection kit：thermo fisher公司；
76.opti-mem
tm
i reduced serum medium：thermo fisher公司；
77.ni-nta蛋白纯化试剂盒：生工生物工程(上海)股份有限公司；
78.amicon ultra-15离心过滤装置：millipore公司；
79.amicon ultra-0.5离心过滤装置：millipore公司；
80.pbs ph7.4(1
×
)：gibco公司；
81.凝胶成像系统：protein simple公司；
82.细胞计数仪：roche公司；
83.超净工作台：苏州安泰空气技术有限公司；
84.电热恒温水浴锅：fisher scientific公司；
85.co2恒温摇床：crystal公司；
86.hyg-a全恒温摇瓶柜：太仓市实验设备厂；
87.dyy-6c型电泳仪：北京市六一仪器厂；
88.dycp-31dn型水平电泳槽：北京市六一仪器厂；
89.nanodrop分光光度计：fisher scientific公司；
90.微量移液器：eppendorf公司。
91.实施例1、重组表达质粒构建
92.流感毒株选自who发布的北半球2021-2022鸡胚培养流感病毒疫苗组分a/cambodia/e0826360/2020(h3n2)毒株(gsiaid登录号为epi_isl_806547)，其中，ha抗原选自第17到529位胞外区。
93.ha抗原天然信号肽ha，人工信号肽sp1和白蛋白信号肽al的编码基因融合到流感
毒株a/cambodia/e0826360/2020(h3n2)ha抗原蛋白的编码基因5’端，对应片段名称分别为ha-ha，sp1-ha和al-ha)，克隆至pcgs3载体，构建真核重组表达质粒，具体操作流程如下文所述。
94.ha-ha基因合成：天然信号肽ha的碳端融合流感病毒抗原ha，委托生工生物进行密码子优化，合成序列ha-ha核酸序列(seq id no.6)，生工生物交付合成质粒为puc57-ha-ha。
95.采用puc57-ha-ha为模板，使用聚合酶gxl premix(takara公司)扩增sp1-ha和al-ha目的片段。
96.sp1-ha基因片段扩增：用puc57-ha-ha为模板，引物1和引物5扩增片段a，片段a作为第二轮模板，使用引物2和引物5进行第二轮扩增获得片段b，即为sp1-ha目标片段；
97.al-ha基因片段扩增：用puc57-ha-ha为模板，引物3和引物5扩增片段c，片段c作为第二轮模板，使用引物4和引物5进行第二轮扩增获得片段d，即为al-ha目标片段。
98.上述pcr扩增使用引物序列如下：
99.引物1：5
’‑
tggtgctgatgttctggattcctgctgctagatctcagaaaatccctggaaatg-3’；
100.引物2：5
’‑
cccaagcttgccaccatggccttgcctgtttggctgttggtgctgatgttctggat t-3’(下划线部分为hindiii识别序列)；
101.引物3：5
’‑
tatttccctgctgtttagctccgcctatagtcagaaaatccctggaaatg-3’；
102.引物4：5
’‑
cccaagcttgccaccatgaagtgggtgacatttatttccctgctgtttagctc-3’(下划线部分为hindiii识别序列)；
103.引物5：5
’‑
ccttaattaattagtggtgatgatggtggtggtg-3’(下划线部分为paci识别序列)。pcgs3载体经hindiii和paci双酶切获得载体片段，puc57-ha-ha以及扩增片段sp1-ha和al-ha经hindiii和paci双酶切，获得目标片段。采用dna ligation kit ver.2.1(takara公司)进行连接，转化，提取质粒，鉴定，获得重组表达质粒pcgs3-ha-ha、pcgs3-sp1-ha和pcgs3-al-ha。
104.所得三种重组表达质粒的酶切鉴定结果如图1所示。由图可见，第1泳道为pcgs3-ha-ha表达质粒双酶切鉴定，第2泳道为pcgs3-sp1-ha表达质粒双酶切鉴定，第3泳道为pcgs3-al-ha表达质粒双酶切鉴定。酶切后载体片段大小约7100bp，目标基因大小约1650bp；酶切条带大小符合预期。
105.重组表达质粒pcgs3-ha-ha的结构描述：在pcgs3载体的酶切位点hindiii和paci之间插入seq id no.6所示dna片段后得到的重组载体。seq id no.6的第1-6位为hindiii酶切位点，7-12位为kozak序列，13-60位为天然信号肽ha编码基因，第第61-1599位为ha抗原编码基因，1600-1614位为linker接头，1615-1638位为组氨酸标签，1639-1641位为终止密码子，1642-1649位为paci酶切位点。
106.重组表达质粒pcgs3-sp1-ha的结构描述：在pcgs3载体的酶切位点hindiii和paci之间插入seq id no.7所示dna片段后得到的重组载体。seq id no.7的第1-6位为hindiii酶切位点，7-12位为kozak序列，13-69位为人工信号肽sp1编码基因，第70-1608位为ha抗原编码基因，1609-1623位为linker接头，1624-1647位为组氨酸标签，1648-1650位为终止密码子，1651-1658位为paci酶切位点。
107.重组表达质粒pcgs3-al-ha的结构描述：在pcgs3载体的酶切位点hindiii和paci
之间插入seq id no.8所示dna片段后得到的重组载体。seq id no.8的第1-6位为hindiii酶切位点，7-12位为kozak序列，13-60位为白蛋白信号肽al编码基因，第61-1599位为ha抗原编码基因，1600-1614位为linker接头，1615-1638位为组氨酸标签，1639-1641位为终止密码子，1642-1649位为paci酶切位点。
108.seq id no.8编码seq id no.5所示蛋白质。seq id no.5的第1-16位为白蛋白号肽al，第17-529位为ha抗原，第530-534位为linker接头，第535-542位为组氨酸标签。
109.实施例2、电泳图灰度分析
110.电泳图灰度分析采用image j软件。操作步骤为image
→
type
→
32-bit转化为灰度图；process
→
subtract background
→
ok去除背景色；矩形工具选择泳道
→
analyze
→
gel
→
select first lane确定分析泳道，重复选择多条泳道同时分析；analyze
→
gel
→
plot lane生成峰面积；线性工具选择目标条带对应峰图，wand工具计算对应峰图面积，即可求得目标蛋白表达量占总蛋白百分比。
111.实施例3、蛋白瞬转表达
112.一、宿主细胞
113.从液氮罐中取宿主细胞expi293f的种子库细胞，于37℃水浴迅速解冻，将解冻后的细胞悬液无菌转移至装有30ml预热的完全生长培养基的125ml药瓶中，摇床培养条件：37℃，8％ co2，120rpm，振幅25mm，湿度≥80％。15-30min后取细胞悬液检测细胞密度与活率。
114.待细胞活率恢复90％以上，细胞密度达3-5
×
106cells/ml，按0.3-0.5
×
106cells/ml进行接种扩增。
115.二、细胞转染
116.将实施例1构建的重组载体pcgs3-ha-ha，pcgs3-sp1-ha和pcgs3-al-ha分别转染宿主细胞，分别记作信号肽ha实验组，人工信号肽sp1实验组和信号肽al实验组。
117.1、转染前一天
118.转染前24h将细胞以2.5-3
×
106cells/ml重新接种，培养24h。
119.2、转染当天
120.(1)细胞密度应达到4.5-5.5
×
106cells/ml，活率应≥95％。用新鲜预热的完全生长培养基将细胞稀释至3
×
106cells/ml。
121.(2)准备转染试剂和dna复合物
122.1)dna稀释
123.用无菌水将质粒(实施例1构建的pcgs3-ha-ha，pcgs3-sp1-ha和pcgs3-al-ha)稀释至1μg/μl，按照1ml细胞转染1μg质粒的量，取转染50ml细胞所需质粒的量，即50μl质粒加入3ml opti-mem
tm i reduced serum medium备用。
124.2)转染试剂稀释
125.使用前将转染试剂expifectamine293
tm reagent轻轻上下颠倒混匀，取转染50ml细胞所需转染试剂的量，即160μl expifectamine293
tm reagent于2.8ml opti-memtm i reduced serum medium中轻轻上下颠倒混匀，室温静置5min。
126.3)将稀释好的转染试剂加入质粒中轻轻上下颠倒混匀，室温反应10-20min。将混合好的转染试剂和dna复合物缓慢加入细胞培养物中。37℃，8％ co2，120rpm，振幅25mm，湿度≥80％条件培养。
127.3、转染后第一天
128.在转染后18-22h，按照转染50ml细胞的量添加增强剂。即，取300μlexpifectamine
tm 293transfection enhancer 1与3ml expifectamine
tm
293transfection enhancer 2混匀后缓慢加入细胞培养物中。
129.4、培养上清收集
130.转染后每天监测细胞活率，第4天当活率降至65％-75％时终止培养，收集培养物于3500g离心30min收集上清(各组之间按照完全相同的方法收集上清)。sds-page鉴定(各组之间的上样体积一致)及按照实施例2方法灰度分析证明：信号肽ha、信号肽sp1和信号肽al实验组目的蛋白表达量占总蛋白的3.88％，4.35％和16.13％(图2和图3)。综上可知：与天然信号肽ha和人工信号肽sp1相比，本发明的白蛋白信号肽al具有更高的流感毒株a/cambodia/e0826360/2020(h3n2)ha抗原的分泌表达效率(分泌表达效率指：分泌蛋白中，目标蛋白与总蛋白表达量的比值)。
131.实施例4、蛋白纯化
132.1、超滤浓缩
133.收样上清(即实施例3步骤4中“收集培养物于3500g离心30min”后所得上清)进行4℃，amicon ultra-15离心过滤装置(millipore公司)6000g离心20min超滤浓缩，最终细胞上清浓缩至20-30ml。
134.2、镍柱纯化
135.步骤1获得的超滤浓缩上清和binding/wash buffer按照体积比1：1混匀，静置20min充分孵育。两倍柱体积的binding/wash buffer平衡柱子，缓冲液依靠重力流穿预装柱。将超滤浓缩上清和binding/wash buffer混匀液加入柱子依靠重力流穿预装柱；如有剩余样品可再次上样，重新流通一次，收集流穿液到离心管中。两倍柱体积的binding/wash buffer清洗柱子并收集流穿液，直到流穿液的吸光度280nm接近基线。两倍柱体积的elution buffer洗脱柱上的组氨酸标签蛋白，重复此步骤直到流穿液的吸光度280nm接近基线，收集洗脱液待超滤置换。
136.3、超滤置换
137.镍柱纯化后的蛋白洗脱液加amicon ultra-0.5离心过滤装置(millipore公司)，分批10000g离心3min，直至溶液剩余约150μl。轻轻加入300μl pbs(ph7.4)，10000g离心至剩余150μl，重复三次。pbs(ph7.4)洗脱超滤管收样，最终体积约1-2ml，留样5μl用于蛋白浓度测定(利用nanodrop分光光度计紫外吸收法检测)和sds-page蛋白电泳检测。
138.目的蛋白分泌表达产量＝蛋白浓度
×
体积/细胞培养体积。
139.纯化后鉴定及按照实施例2方法灰度分析证明：信号肽ha、人工信号肽sp1和信号肽al实验组目的蛋白纯度分别为93.60％，91.18％和90.83％(图4和图5)。紫外吸收法检测(nanodrop分光光度计)信号肽ha、人工信号肽sp1和信号肽al实验组目的蛋白分泌表达产量分别为11.78mg/l、17.61mg/l和43.57mg/l。可见信号肽al实验组目的蛋白的分泌表达产量显著高于信号肽ha、人工信号肽sp1实验组。
140.采用铝盐；或cpg；或脂质体；或油性佐剂即可产生流感病毒免疫组合物，用于预防流感。
141.综合以上各实施例的结果，本发明采用天然信号肽ha、人工信号肽sp1和白蛋白信
号肽al(seq id no.1)引导流感毒株a/cambodia/e0826360/2020(h3n2)ha抗原真核细胞分泌表达。本发明白蛋白信号肽al实验组目的蛋白的分泌表达产量以及分泌表达效率均显著优于天然信号肽ha和人工信号肽sp1，更适用于大规模工业化生产，降低生产成本。
142.以上对本发明进行了详述。对于本领域技术人员来说，在不脱离本发明的宗旨和范围，以及无需进行不必要的实验情况下，可在等同参数、浓度和条件下，在较宽范围内实施本发明。虽然本发明给出了特殊的实施例，应该理解为，可以对本发明作进一步的改进。总之，按本发明的原理，本技术欲包括任何变更、用途或对本发明的改进，包括脱离了本技术中已公开范围，而用本领域已知的常规技术进行的改变。

技术特征：
1.seq id no.1所示多肽或其相关生物材料在如下任一中的应用：p1、提高流感毒株a/cambodia/e0826360/2020(h3n2)ha抗原在宿主细胞中的分泌表达产量；p2、提高流感毒株a/cambodia/e0826360/2020(h3n2)ha抗原在宿主细胞中的分泌表达效率；p3、制备流感毒株a/cambodia/e0826360/2020(h3n2)ha抗原分泌蛋白制品；所述相关生物材料为seq id no.1所示多肽的编码基因或含有所述编码基因的表达盒或重组载体或重组菌或转基因细胞系；所述宿主细胞为真核宿主细胞。2.根据权利要求1所述的应用，其特征在于：所述编码基因为如下任一：(a1)seq id no.2所示的dna分子；(a2)在严格条件下与(a1)限定的dna分子杂交且编码seq id no.1所示多肽的dna分子；(a3)与(a1)或(a2)限定的dna序列具有99％以上、95％以上、90％以上、85％以上或者80％以上同源性且编码seq id no.1所示多肽的dna分子。3.融合蛋白，自n端到c端顺次包含seq id no.1所示多肽和流感毒株a/cambodia/e0826360/2020(h3n2)ha抗原。4.根据权利要求1-3中任一所述的应用或融合蛋白，其特征在于：所述流感毒株a/cambodia/e0826360/2020(h3n2)ha抗原的氨基酸序列如seq id no.3所示。5.根据权利要求4所述的融合蛋白，其特征在于：所述融合蛋白的氨基酸序列如seq id no.5的第1-529位或第1-534位所示或如seq id no.5所示。6.编码权利要求3-5中任一所述融合蛋白的核酸分子。7.根据权利要求6所述的核酸分子，其特征在于：所述核酸分子自5’端到3’端顺次包含seq id no.1所示多肽的编码基因和流感毒株a/cambodia/e0826360/2020(h3n2)ha抗原的编码基因；进一步地，所述seq id no.1所示多肽的编码基因为如下任一：(a1)seq id no.2所示的dna分子；(a2)在严格条件下与(a1)限定的dna分子杂交且编码seq id no.1所示多肽的dna分子；(a3)与(a1)或(a2)限定的dna序列具有99％以上、95％以上、90％以上、85％以上或者80％以上同源性且编码seq id no.1所示多肽的dna分子；和/或进一步地，所述流感毒株a/cambodia/e0826360/2020(h3n2)ha抗原的编码基因为如下任一：(b1)seq id no.4所示的dna分子；(b2)在严格条件下与(b1)限定的dna分子杂交且相同蛋白质的dna分子；(b3)与(b1)或(b2)限定的dna序列具有99％以上、95％以上、90％以上、85％以上或者80％以上同源性且编码相同蛋白质的dna分子；和/或
更进一步地，所述核酸分子为seq id no.8的第7-1599位或第7-1614位所示dna分子或seq id no.8的第7-1641位所示dna分子。8.含有权利要求6或7所述核酸分子的表达盒、重组载体、重组菌或转基因细胞系。9.权利要求3-5中任一所述融合蛋白或权利要求6或7所述的核酸分子或权利要求8所述的表达盒、重组载体、重组菌或转基因细胞系在如下任一中的应用：p1、提高流感毒株a/cambodia/e0826360/2020(h3n2)ha抗原在宿主细胞中的分泌表达产量；p2、提高流感毒株a/cambodia/e0826360/2020(h3n2)ha抗原在宿主细胞中的分泌表达效率；p3、制备流感毒株a/cambodia/e0826360/2020(h3n2)ha抗原分泌蛋白制品；所述宿主细胞为真核宿主细胞。10.一种制备流感毒株a/cambodia/e0826360/2020(h3n2)ha抗原分泌蛋白的方法，包括如下步骤：(a1)将权利要求6或7所述的核酸分子导入宿主细胞，得到重组细胞；(a2)培养所述重组细胞，从培养上清中获得流感毒株a/cambodia/e0826360/2020(h3n2)ha抗原分泌蛋白；所述宿主细胞为真核宿主细胞。

技术总结
本发明公开了一种A/Cambodia/e0826360/2020(H3N2)HA抗原制备方法。本发明提供了SEQ ID No.1所示多肽或其相关生物材料在如下任一中的应用：提高流感毒株A/Cambodia/e0826360/2020(H3N2)HA抗原在真核宿主细胞中的分泌表达产量或分泌表达效率；制备流感毒株A/Cambodia/e0826360/2020(H3N2)HA抗原分泌蛋白制品。本发明采用白蛋白信号肽A1引导流感毒株A/Cambodia/e0826360/2020(H3N2)HA真核细胞分泌表达，效果显著优于天然信号肽Ha和人工信号肽SPl，本发明技术方案更适用于大规模工业化生产，降低生产成本。降低生产成本。


技术研发人员：邢体坤 张静静 宋路萍 刘伟 安文琪 王斌
受保护的技术使用者：晟明生物技术（郑州）有限公司
技术研发日：2023.04.21
技术公布日：2023/8/1